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1.水分、粗蛋白、灰分分析方法全部采用國標法。 1)水分的測定 GB6435-86 試樣在105±2℃烘箱內,在大氣壓下烘干,直至恒重,逸失的重量為水分。 2)粗蛋白的測定 GB/T 6432—94 凱氏定氮法:凱氏法測定試樣中的含氮量,即在催化劑作用下,用硫酸破壞有機物,使含氮物轉化成硫酸銨。加入強堿進行蒸餾使氨逸出,用硼酸吸收后,再用酸滴定,測出氮含量,將結果乘以換算系數6.25,計算出粗蛋白含量。 3)粗灰分的測定 GB/T 6438-92 試料在550℃灼燒后所得殘渣,用質量百分率來表示。殘渣中主要是氧化物、鹽類等礦物質,也包括混入飼料中的砂石、土等,故稱粗灰分。 2. pH的測定 稱取樣品10g與50ml的燒杯中,移取10ml去離子水,攪拌30min,用 pHS-3C型pH計測定溶液的pH值,或者用精密pH試紙測試。 3.菌落總數測定 菌落總數就是指在一定條件下(如需氧情況、營養條件、pH、培養溫度和時間等)每克(每毫升)檢樣所生長出來的細菌菌落總數。按國家標準方法規定,即在需氧情況下,37℃培養48h,能在普通營養瓊脂平板上生長的細菌菌落總數,所以厭氧或微需氧菌、有特殊營養要求的以及非嗜中溫的細菌,由于現有條件不能滿足其生理需求,故難以繁殖生長。因此菌落總數并不表示實際中的所有細菌總數,菌落總數并不能區分其中細菌的種類。 操作方法: 1)以無菌操作取檢樣10g,放于90mL滅菌生理鹽水或其他稀釋液的滅菌玻璃瓶內(瓶內預置適當數量的玻璃珠),經充分振要或研磨制成1:10的均勻稀釋液。 固體檢樣在加入稀釋液后,最好置滅菌均質器中以8000~10000r/min的速度處理1min,制成1:10的均勻稀釋液。 用1ml滅菌吸管吸取1:10稀釋液1ml,沿管壁徐徐注入含有9ml滅菌生理鹽水或其他稀釋液的試管內,振搖試管混合均勻,制成1:100的稀釋液。 另取1ml滅菌吸管,按上項操作順序,制10倍遞增稀釋液,如此每遞增稀釋一次即換用1支1ml滅菌吸管。 2)傾注培養 根據標準要求或對污染情況的估計,選擇2~3個適宜稀釋度,分別在制10倍遞增稀釋的同時,以吸取該稀釋度的吸管移取1ml稀釋液于滅菌平皿中,每個稀釋度做兩個平皿。 將涼至46℃營養瓊脂培養基注入平皿約15ml,并轉動平皿,混合均勻。同時將營養瓊脂培養基傾入加有1ml稀釋液(不含樣品)的滅菌平皿內作空白對照。 待瓊脂凝固后,翻轉平板,置36±1℃溫箱內培養48±2h,取出計算平板內菌落數目,乘以稀釋倍數,即得每克(每毫升)樣品所含菌落總數。 說明:傾注用培養基應在46℃水浴內保溫,溫度過高會影響細菌生長,過低瓊脂易于凝因而不能與菌液充分混勻。如無水浴,應以皮膚感受較熱而不燙為宜。培養溫度一般為37℃。培養時間一般為72h?! ?/font> 3)計數和報告 培養到時間后,計數每個平板上的菌落數。可用肉眼觀察,必要時用放大鏡檢查,以防遺漏。在記下各平板的菌落總數后,求出同稀釋度的各平板平均菌落數,計算處原始樣品中每克(或每ml)中的菌落數,進行報告。 說明:計數時應選取菌落數在30~300之間的平板(SN標準要求為25~250個菌落),若有二個稀釋度均在30~300之間時,按國家標準方法要求應以二者比值決定,比值小于或等于2取平均數,比值大于2則其較小數字(有的規定不考慮其比值大小,均以平均數報告);若所有稀釋度均不在計數區間。如均大于300,則取最高稀釋度的平均菌落數乘以稀釋倍數報告之。如均小于30,則以最低稀釋度的平均菌落數乘稀釋倍數報告之。如菌落數有的大于300,有的又小于30,但均不在30~300之間,則應以最接近300或30的平均菌落數乘以稀釋倍數報告之。如所有稀釋度均無菌落生長,則應按小于1乘以最低稀釋倍數報告之。有的規定對上述幾種情況計算出的菌落數按估算值報告;不同稀釋度的菌落數應與稀釋倍數成反比(同一稀釋度的二個平板的菌落數應基本接近),即稀釋倍數愈高菌落數愈少,稀釋倍數愈低菌落數愈多;當平板上有鏈狀菌落生長時,如呈鏈狀生長的菌落之間無任何明顯界限,則應作為一個菌落計,如存在有幾條不同來源的鏈,則每條鏈均應按一個菌落計算,不要把鏈上生長的每一個菌落分開計數。如有片狀菌落生長,該平板一般不宜采用,如片狀菌落不到平板一半,而另一半又分布均勻,則可以半個平板的菌落數乘2代表全平板的菌落數;當計數平板內的菌落數過多(即所有稀釋度均大于300時),但分布很均勻,可取平板的一半或1/4計數。再乘以相應稀釋倍數作為該平板的菌落數。
由于發酵飼料中有芽孢桿菌,乳桿菌,酵母菌等多種菌,故檢測應取其總數,酵母和芽孢生長速度較快,乳桿菌為兼性厭氧菌,生長速度較慢,應將平板培養3-5天檢測菌數,結果較為接近真實。
4.雜菌測定
發酵料目測應無污染(白毛-毛霉或根霉,綠毛-青霉),平板培養(方法同上)霉菌總數<1000個/克。
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